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什么是体外受精体外受精的程序

时间: 谢君787 分享

什么是体外受精体外受精的程序

  自然界体外受精的生物包括鱼类与两栖类,是指精子与卵子在雌性生物体外结合产生受精卵的受精方式。那么你对体外受精了解多少呢?以下是由学习啦小编整理关于什么是体外受精的内容,希望大家喜欢!

  体外受精的简介

  体外受精是指哺乳动物的精子和卵子在体外人工控制的环境中完成受精过程的技术,英文简称为IVF。由于它与胚胎移植技术(ET)密不可分,又简称为IVF-ET。在生物学中,把体外受精胚胎移植到母体后获得的动物称试管动物。这项技术成功于20世纪50年代,在最近20年发展迅速,现已日趋成熟而成为一项重要而常规的动物繁殖生物技术引。

  体外受精的技术应用

  牛的体外受精技术不仅应用于畜牧生产,同时,也成为研究其他胚胎生物技术,如克隆、转基因、胚胎干细胞分离培养和性别控制等的重要辅助手段。

  体外受精能怀孕吗

  在不孕症治疗中,体外受精技术是与胚胎移植技术相关联的。就是说当受精卵在人工孵育的条件下经过分裂,达到8至16个卵裂细胞时,再用人工方法移入分泌期的妇女子宫内,使孕卵着床。体外受精和胚胎移植技术的结合,就是人们通俗说的“试管婴儿”技术,随着科学的发展,这一技术在不孕症治疗中将发挥更大作用。

  所谓协助性体外受精,就是将精子或卵子取出体外,经过处理或培养成胚胎后,再植入人体内,克服传统治疗的障碍,其中大家最熟悉的治疗就是试管婴儿。实际上最简单的精子洗涤合并子宫的体外授精术也是体外受精的一种,对于轻度的不孕症疾病,例如轻度的精子活动力差,夫妻体内的抗精子抗体的自体免疫疾病,子宫颈的疾病,性交与射精障碍者,施以体外授精治疗每次有20%的怀孕率。

  体外受精的程序

  采集培养

  1.卵母细胞的采集:卵母细胞的采集方法通常有三种。

  ⑴超数排卵:对于实验动物如小鼠、兔,以及家畜猪、羊等采用的主要方法是;用促性腺激素处理,使其排出更多的卵子,然后,从输卵管中冲取成熟卵子可直接与获能精子受精。在大家畜中,由于操作程序复杂,成本较高,很少使用。这种方法的关键是掌握卵子进入输卵管和卵子在输卵管中维持受精能力的时间,一般要求在卵子具有旺盛受精力之前冲取。

  ⑵从活体卵巢中采集卵母细胞 :这种方法是借助超声波探测仪、内窥镜或腹腔镜直接从活体动物的卵巢中吸取卵母细胞。

  在家畜中, 牛和马等大家畜常用超声波探测仪辅助取卵,其方法是用手从直肠把握卵巢,经阴道壁穿刺插入吸卵针,借助B型超声波图像引导,吸取大卵泡中的卵母细胞。按照目前的技术水平,一头健康母牛每周可获得5~10枚卵子。在家畜中,活体采集的卵母细胞一般要经成熟培养后才能与精子受精。这种方法对扩繁优良母畜具有重大意义,在有些国家已用于商业化生产。

  ⑶从屠宰后母畜卵巢上采集卵母细胞:这种方法是从刚屠宰母畜体内摘出卵巢,经洗涤、保温(30℃~37℃)后,快速运到实验室,在无菌条件下用注射器或真空泵抽吸卵巢表面一定直径卵泡中的卵母细胞(牛卵泡直径要求3-10mm)也可对卵巢进行切片,收集卵母细胞。用此方法获得的卵母细胞多数处于生发泡期(GV期),需要在体外培养成熟后才能与精子受精。从废弃卵巢中采集卵母细胞的关键是注意卵巢的保温和防止细菌污染。因此卵巢从畜体摘取后须放入含有生理盐水或磷酸缓冲液(PBS)的保温瓶中;吸卵前卵巢要用生理盐水或PBS多次洗涤;所用溶液都要添加抗生素。

  这种方法的最大优点是材料来源丰富,成本低廉,但确定母畜的系谱困难。

  2.母细胞的选择:采集的卵母细胞绝大部分与卵丘细胞形成卵丘卵母细胞复合体(cumulus oocyte complesx COC)。无论采用何种方法,采集的COC都要求卵母细胞形态规则,细胞质均匀,外围有多层卵丘细胞紧密包围。在家畜体外受精研究中,常把未成熟卵母细胞分为A、B、C和D四个等级。A级卵母细胞要求有三层以上卵丘细胞紧密包围,细胞质均匀;B级要求卵母细胞质均匀,卵丘细胞层低于三层或部分包围卵母细胞;C级为没有卵丘细胞包围的裸露卵母细胞;D级是死亡或退化的卵母细胞。在体外受精实践中,一般只培养A级和B级卵母细胞。

  3.卵母细胞的成熟培养:由超数排卵采集的卵母细胞已在体内发育成熟,不需培养可直接与精子受精,对未成熟卵母细胞需要在体外培养成熟。培养时,先将采集的卵母细胞在实体显微镜经过挑选和洗涤后,然后放入成熟培养液中培养。家畜卵母细胞的成熟培养液目前普遍采用TCM199添加孕牛血清、促性腺激素、雌激素和抗生素成份。通常采用微滴培养法,微滴体积为50-200微升,每滴中放入的卵母细胞数按每5微升一个计算单位。卵母细胞移入小滴后,放入二氧化碳培养箱中培养,培养条件为39℃、100%湿度和5%二氧化碳的空气。牛的培养时间为20-24小时,卵丘卵母细胞复合体经成熟培养后,卵丘细胞层扩散靠近卵母细胞周围的卵丘细胞呈放射状排列,出现放射冠,用DNA特意性染料染色后,在显微镜下进行核相观察,可见卵母细胞处于第2次成熟分裂中期。

  精子的采集

  1、假阴道法

  2、手握法

  3、电刺激法

  4、体外受精

  1.精子的获能处理:哺乳动物精子的获能方法有培养和化学诱导两种方法。牛、羊的精子常用化学药物诱导获能,诱导获能的药物常用肝素和钙离子载体。

  2.受精:即获能精子与成熟卵子的共培养,除钙离子载体诱导获能外,精子和卵子一般在获能液中完成受精过程。受精培养时间与获能方法有关。在B2液中一般为6-8小时而用TALP或S.F液作受精液时可培养18~24h。精子和卵子常在小滴中共培养,受精时精子密度为1~9×10 6/ml,每10微升精液中放人1~2枚卵子,小滴体积一般为50~200微升。

  胚胎培养

  精子和卵子受精后,受精卵需移入发育培养液中继续培养以检查受精状况和受精卵的发育潜力,质量较好的胚胎可移入受体母畜的生殖道内继续发育成熟或进行冷冻保存。

  提高受精卵发育率的关键因素是选择理想的培养体系。在家畜中,胚胎培养液分为复杂的和化学成分明确的培养液两大类。复杂培养液中的成分很多,除无机和有机盐外,还添加维生素、氨基酸、核苷酸和嘌呤等营养成分和血清,最常用的有TCM199、B2和F10。用它们培养胚胎时,可以采用体细胞共培养体系,即体细胞与胚胎在微滴中共同培养,利用体细胞生长过程中分泌的有益因子,促进胚胎发育,克服发育阻断。

  受精卵的培养广泛采用微滴法,胚胎与培养液的比例为一枚胚胎用3~10微升培养液;一般5~10枚胚胎放在一个小滴中培养以利用胚胎在生长过程中分泌的活性因子,相互促进发育。胚胎培养条件与卵母细胞成熟培养条件相同。有的实验室采用88% N2、7% O2和5%二氧化碳混合气体培养,以降低培养液中氧自由基浓度,提高胚胎发育率。胚胎在培养过程中要求每48-72小时更换一次培养液,同时观察胚胎的发育状况。当胚胎发育到一定阶段时可进行胚胎移植或冷冻保存,牛、羊受精卵通常培养到致密桑椹胚或囊胚时进行移植或冷冻保存。
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